БИОЛОГИЯ Том 1 - руководство по общей биологии - 2004
5. КЛЕТКИ
5.12. Микроскопические методы
5.12.2. Постоянные препараты
Фиксация
Фиксация — это сохранение материала в состоянии, близком к естественному. Для этого необходимо быстро умертвить ткани, что лучше всего достигается с небольшими кусочками живого материала. Используемое для этого вещество называется фиксатором. Быстрой фиксацией достигается сохранение изначальной структуры объекта, причем ткани уплотняются настолько, что с них можно готовить тонкие срезы.
Обезвоживание
Обезвоживание проводится при подготовке материала к заливке или для заключения его в соответствующую среду (см. ниже), которая не смешивается с водой. Воду необходимо удалить также потому, что иначе препарат будет со временем разрушен бактериями. Для того чтобы сохранить ультраструктуру, обезвоживание надо проводить постепенно, обрабатывая материал рядом водных растворов этанола или пропанона (ацетона) со все возрастающей концентрацией, и закончить обработку «абсолютным» (безводным) этанолом или пропаноном.
Просветление
Некоторые из общеупотребительных сред для заливки и заключения не смешиваются со спиртом. Поэтому его надо постепенно замещать средой (просветляющим веществом), с которой заливочная среда смешивается, например ксилолом. Это приводит также к тому, что материал становится прозрачным.
Заливка
Для того чтобы с помощью микротома получить очень тонкий срез, необходимо, чтобы материал был залит в соответствующую опорную среду. При приготовлении препаратов для световой микроскопии объекты заливают в парафин, которому затем дают остыть. Для электронной микроскопии приходится использовать более твердые вещества (пластмассы или смолы), поскольку здесь необходимы особо тонкие срезы, а значит, и опора должна быть более плотной.
Изготовление срезов
Как правило, толщина кусочков материала слишком велика, чтобы сквозь них могло пройти достаточное для исследования под микроскопом количество света. Обычно приходится срезать очень тонкий слой исследуемого материала, т. е. готовить срезы. Срезы можно делать бритвой или на микротоме. Вручную срезы готовятся с помощью остро отточенной бритвы. Для работы на обычном микроскопе срезы должны быть толщиной 8—12 мкм. Ткань закрепляют между двумя кусочками сердцевины бузины. Бритву смачивают жидкостью, в которой хранилась ткань; срез делают через бузину и ткань, причем бритву держат горизонтально и двигают ее к себе медленным скользящим движением, направленным чуть вкось. Быстро сделав несколько срезов, следует выбрать из них самый тонкий, содержащий характерные участки ткани.
Срез с ткани, залитой в ту или иную среду, можно сделать на микротоме. Для светового микроскопа срезы толщиной в несколько микрометров можно сделать с залитой в парафин ткани с помощью специального стального ножа. На ультратоме изготавливают чрезвычайно тонкие срезы (20—100 нм) для электронного микроскопа. В этом случае необходим алмазный или стеклянный нож.
Срезы для светового микроскопа можно приготовить, не заливая материал в среду; для этого используют замораживающий микротом. В процессе приготовления замороженного среза образец сохраняется в замороженном и, следовательно, в твердом состоянии.
Окрашивание
Как правило, биологические структуры на препаратах прозрачны, поэтому для получения контраста между ними приходится прибегать к различным средствам. Самым распространенным является окрашивание. Некоторые красители, используемые в световой микроскопии, перечислены в табл. 5.5.
Определенные красители в низких концентрациях не токсичны для живых тканей и поэтому могут применяться для окрашивания живого материала. Их называют прижизненными (витальными) красителями. К ним относятся, например, метиленовый синий и нейтральный красный.
При окрашивании парафиновых срезов парафин удаляют с помощью растворителя, а срез перед окрашиванием частично обводняют.
Таблица 5.5. Красители, применяемые для окрашивания растительных и животных тканей
Краситель |
Окончательный цвет |
Окрашиваемый материал |
Постоянные красители |
||
Анилиновый синий в лактофеноле |
Синий |
Гифы грибов и споры |
Борный кармин |
Розовый |
Ядра; особенно для крупных препаратов животного материала, например колонии Obelia |
Гематоксилин |
Синий |
Ядра; главным образом для срезов животных тканей в сочетании с эозином, окрашивающим цитоплазму; также для мазков |
Краситель Лейшмана |
Красно-розовый Синий |
Клетки крови Ядра лейкоцитов |
Краситель Фёльгена |
Красный или пурпурный |
ДНК; особенно хорошо выявляет хромосомы во время клеточного деления |
Метиленовый синий |
Синий |
Ядра (раствор 0,125% метиленового синего в 0,75% NaCl годен как прижизненный краситель) |
Сафранин |
Красный |
Ядра; лигнин и суберин у растений; используется в основном для срезов растительных тканей в сочетании со светлым зеленым для окрашивания цитоплазмы |
Эозин |
Розовый Красный |
Цитоплазма (см. гематоксилин) Целлюлоза |
Светлый зеленый или прочный зеленый |
Зеленый |
Цитоплазма и целлюлоза (см. сафранин) |
Временные красители |
||
Анилина гидрохлорид или анилина сульфат |
Желтый |
Лигнин |
Раствор йода |
Сине-черный |
Крахмал |
Раствор Шульца |
Желтый |
Лигнин, кутан, суберин, белок |
(хлор-цинк-йод) |
Синий Синий или фиолетовый |
Крахмал Целлюлоза |
Флороглюцинол + конц. НСl |
Красный |
Лигнин |
Заключение
Полностью окрашенные срезы заключают на предметном стекле в специальную среду, например в канадский бальзам или эупарол; она не пропускает воздух, так что срез может сохраняться в ней неограниченно долго. Заключенный в среду срез накрывают покровным стеклом.
Последовательность описанных выше действий типична, когда речь вдет о приготовлении тонких срезов для постоянных препаратов. Однако часто в порядок действий вносят два следующих изменения:
а) если срез сырого материала готовят вручную, то сначала делают срез, а потом его фиксируют;
б) окрашивать можно после фиксации или же в процессе обезвоживания на какой-либо его стадии. Например, красителем, растворенным в 50%-ном этаноле, можно окрасить срез после его обезвоживания в 50%-ном этаноле.
Описанная процедура приготовления препаратов в основном сходна как для светового, так и для электронного микроскопов, хотя существуют некоторые различия в деталях (они перечислены в табл. 5.6).
Таблица 5.6. Различия в подготовке материалов для светового и электронного микроскопов
Обработка |
Для светового микроскопа |
Для электронного микроскопа |
Фиксация |
Как для электронного микроскопа или, например, 99 частей этанола + 1 часть ледяной уксусной кислоты или 70%-ный этанол (но в этом случае происходит сморщивание и повреждение тонких структур) |
Часто используется глутаральдегид или смесь глутаральдегида и осмиевой кислоты (OsO4). OsO4также окрашивает липиды и, следовательно, мембраны в черный цвет. Маленькие кусочки материала фиксируются быстрее и в них лучше сохраняются тонкие структуры |
Обезвоживание |
Ряд растворов этанола или пропанона в возрастающей концентрации |
|
Заливка |
Парафин |
Смола (например, аралдит, эпон) или пластмасса |
Приготовление срезов |
Стальной нож |
Только алмазный и стеклянный ножи являются достаточно острыми, чтобы сделать ультратонкие срезы |
Используется микротом Срезы толщиной в несколько микрометров |
Используется ультратом Срезы толщиной 20-100 нм |
|
Окрашивание |
Цветные красители (отражают видимый свет) |
Тяжелые металлы, например соединения осмия, урана, свинца (отражают электроны) |